Daftar Isi:
- Pengantar
- Dari antibodi ke RNA: bagaimana pemeriksaan darah berkembang
- Kuesioner donor: garis pertahanan pertama
- Uji serologi: tes skrining kedua
- Uji asam nukleat: tonggak penting dalam bidang molekuler
- Pengujian asam nukleat merupakan terobosan penting di negara-negara dengan tingkat endemisitas sedang hingga tinggi.-
- Perluasan daftar ancaman: mengapa skrining darah terus berkembang
- Gelombang infeksi virus berikutnya
- Parasit: langka tetapi berisiko tinggi
- Kesimpulan
Pendahuluan
Setiap unit darah yang didonorkan memiliki potensi untuk menyelamatkan nyawa, tetapi juga mengandung risiko. Transfusi darah adalah salah satu intervensi medis yang paling kritis dan menyelamatkan nyawa. Transfusi darah mendukung pasien selama operasi, cedera, pengobatan kanker, persalinan, dan anemia berat. Namun, karena darah adalah produk biologis, ia tidak hanya mencerminkan kesehatan pendonor tetapi juga risiko epidemiologi di daerah pendonor. Meskipun sistem global telah berkembang untuk membuat transfusi lebih aman dari sebelumnya, risiko infeksi yang ditularkan melalui transfusi (TTIs) belum sepenuhnya dihilangkan – hanya dikelola. Pengelolaannya tergantung pada tiga faktor kunci: seberapa teliti kita dalam memilih donor, seberapa ketat kita dalam menyaring darah, dan seberapa siap kita menghadapi ancaman infeksi berikutnya. Selama empat dekade terakhir, pengenalan tes serologi untuk HIV, hepatitis B (HBV), dan hepatitis C (HCV) telah menurunkan risiko penularan. Namun, tes ini memiliki “periode jendela”, waktu setelah infeksi ketika donor terinfeksi tetapi hasil tesnya masih tes negatif [1]. Hal ini menyebabkan adanya celah dalam deteksi, terutama di wilayah dengan prevalensi penyakit yang tinggi atau wabah musiman penyakit yang ditularkan oleh vektor, seperti demam berdarah dan Zika [2]. Oleh karena itu, keamanan darah tidak hanya bergantung pada apa yang kita periksa dalam darah, tetapi juga pada seberapa cepat kita merespons ancaman yang muncul.
Dari antibodi hingga RNA: bagaimana pemeriksaan darah berkembang
Sistem skrining darah yang kita andalkan saat ini tidak dibangun dalam semalam. Ia dibentuk oleh berbagai krisis, diperbaiki dengan ilmu pengetahuan, dan disempurnakan melalui uji coba. Setiap patogen baru yang ditemukan mengungkap titik buta. Setiap pasien yang dirugikan menjadi sebuah studi kasus tentang apa yang harus diubah. Saat ini, kami memiliki sistem pertahanan lapis tiga → Pemilihan donor → Skrining serologis → Uji Asam Nukleat (NAT).
Kuesioner donor: Garis pertahanan pertama
Langkah pertama dalam keamanan darah dimulai dengan sebuah percakapan. Kuesioner riwayat donor merupakan alat yang efektif di garis depan untuk menilai risiko. Kuesiner ini menggunakan pertanyaan yang terstruktur dan didukung oleh bukti untuk menyaring faktor-faktor seperti penyakit baru-baru ini, riwayat perjalanan ke wilayah dengan risiko infeksi yang berbeda, riwayat medis, dan perilaku berisiko tinggi. Penilaian berbasis risiko ini membantu mencegah donor yang berpotensi menular masuk ke dalam pasokan darah, yang seringkali terjadi sebelum tes dilakukan. Jika dirancang dengan baik dan diterapkan secara ketat, kuesioner ini dapat mengeliminasi sebagian besar donor berisiko tinggi. Namun, informasi tersebut sepenuhnya bergantung pada laporan mandiri, dan tidak ada sistem yang didasarkan pada pengungkapan yang dapat sepenuhnya bebas dari kesalahan. Bahkan donor yang memenuhi semua kriteria kelayakan masih dapat membawa infeksi yang tidak terdeteksi. Misalnya, di daerah pedesaan utara Vietnam, hampir 45% penduduk menunjukkan bukti paparan virus hepatitis B (HBV) di masa lalu, meskipun sebagian besar pendonor darah tidak menunjukkan gejala [3]. Hal ini menyoroti keterbatasan utama: risiko rendah tidak berarti tanpa risiko. Meskipun kuesioner donor tetap menjadi filter yang penting, ia harus didukung dengan protokol skrining yang kuat yang dapat mendeteksi infeksi yang terlewatkan selama proses skrining donor [4].
Uji serologi: tes skrining kedua
Pengenalan pengujian serologi untuk hepatitis dan HIV pada tahun 1980-an mengubah standar keamanan darah. Dengan memungkinkan deteksi antibodi dan antigen permukaan untuk HIV, hepatitis B (HBV), hepatitis C (HCV), dan sifilis, pengujian ini membuat setiap donor darah menjadi lebih aman di seluruh dunia. Skrining sifilis, khususnya, telah menjadi bagian dari protokol donor selama beberapa dekade. Meskipun sering dianggap sebagai tes “lama” atau warisan, relevansinya justru semakin meningkat. Data global menunjukkan peningkatan kembali kasus infeksi sifilis, sehingga skrining berkelanjutan menjadi sangat penting. Di Thailand, misalnya, prevalensi serologis sifilis di kalangan pendonor darah tetap sebesar 0,42%, dengan tingkat yang lebih tinggi pada pendonor pertama kali dan pendonor laki-laki [5,6]. Kemajuan skrining serologi telah mengurangi infeksi yang ditularkan melalui transfusi (TTI) secara signifikan di seluruh dunia. Namun, hal ini dibatasi oleh “periode jendela”. Jika darah didonorkan selama periode ini, infeksi mungkin terlewatkan, dan risiko kecil namun nyata terjadinya TTI tetap ada. Batasan-batasan ini menyoroti kebutuhan akan teknologi pelengkap yang dapat mendeteksi infeksi lebih awal dalam perkembangannya, terutama di wilayah dengan prevalensi penyakit yang tinggi atau ancaman epidemiologis yang terus berkembang.
Pengujian asam nukleat: tonggak molekuler
Sejak diperkenalkan pada akhir 1990-an, pengujian asam nukleat (NAT) telah menjadi standar emas di negara-negara dengan infrastruktur yang mendukungnya. Di seluruh kawasan Asia Pasifik, adopsi NAT masih tidak konsisten, dengan banyak layanan transfusi darah hanya mengandalkan serologi. Hal ini menimbulkan celah kritis dalam keamanan, terutama di negara-negara dengan prevalensi tinggi infeksi yang dapat ditularkan melalui transfusi darah seperti HIV, HBV, dan HCV, atau di mana infeksi baru yang muncul sedang meningkat [7].
Pengujian asam nukleat merupakan terobosan penting di negara-negara dengan tingkat endemisitas sedang hingga tinggi
Setiap tahap proses skrining dirancang untuk mendeteksi apa yang terlewatkan oleh tahap sebelumnya. Namun, ketika lapisan pertama (kuesioner donor) mungkin tidak mendeteksi infeksi baru-baru ini atau yang tanpa gejala, dan lapisan kedua (pengujian serologis) dibatasi oleh periode jendela, lapisan ketiga (NAT) menjadi sangat penting. Dengan mendeteksi langsung RNA atau DNA virus, NAT menutup jendela diagnostik – yaitu hari-hari atau minggu-minggu ketika seorang donor yang terinfeksi tetapi masih menunjukkan hasil negatif dalam tes serologi konvensional. Dengan demikian, NAT telah menjadi alat yang sangat penting dalam mencegah infeksi yang dapat ditularkan melalui transfusi darah, terutama HBV, HCV, dan HIV. NAT versus Serologi: HIV Periode jendela median berlangsung sekitar 18 hari sejak infeksi dan umumnya berkisar antara 10 hingga 24 hari [8]. Tergantung pada sensitivitas uji RNA, RNA dapat terdeteksi cepat antara 5 hingga 10 hari setelah penularan HIV [9]. HCV Uji anti-HCV memiliki jendela waktu sekitar delapan hingga 11 minggu dari paparan HCV hingga deteksi antibodi HCV. RNA HCV terdeteksi sekitar 1-2 minggu setelah paparan HCV [10]. HBV DNA HBV mungkin merupakan satu-satunya penanda yang terdeteksi dalam dua minggu pertama, sedangkan HBsAg muncul di serum dua hingga 10 minggu setelah paparan, sebelum gejala awal dan aminotransferase meningkat [11,12]. Sejak memperkenalkan NAT pada tahun 2005, Korea Selatan telah berhasil mengurangi risiko sisa penularan HCV menjadi hanya 0,27 per sejuta donor [13]. Di Vietnam, skrining antigen permukaan HBV (HBsAg) merupakan praktik standar di semua pusat donor darah. Namun, penelitian menunjukkan bahwa 0,3% dari donor negatif HBsAg masih membawa DNA HBV yang terdeteksi, yang menunjukkan adanya infeksi hepatitis B tersembunyi (OBI). Kasus-kasus ini tidak dapat dideteksi oleh serologi dan hanya dapat diidentifikasi dengan menggunakan NAT [14].
Daftar ancaman yang terus berkembang: mengapa skrining darah terus berkembang
Sebagian besar sistem keamanan darah dibangun berdasarkan empat patogen: HIV, HBV, HCV, dan Sifilis. Namun, daftar tersebut tidak lagi secara akurat mencerminkan lingkup sebenarnya dari risiko TTI, terutama di wilayah-wilayah seperti Asia Pasifik, dimana iklim, migrasi, dan frekuensi wabah mengubah pola epidemiologi. Demam berdarah: prevalensi tinggi, visibilitas rendah Demam berdarah bukanlah penyakit baru, tetapi risiko transfusi darahnya semakin sulit diabaikan. Di seluruh negara Asia Pasifik yang endemik, virusnya menyebar secara luas dan diam-diam. Hingga 87% infeksi demam berdarah tidak menunjukkan gejala. Oleh karena itu, risiko penularannya tidak dapat diidentifikasi melalui kuesioner riwayat donor. Viraemia berlangsung hingga 9 hari, dan RNA telah terdeteksi pada pendonor yang memenuhi syarat selama wabah [2]. Di Vietnam, RNA demam berdarah terdeteksi pada sekitar 0,3% sampel darah donor, sedangkan kasus chikungunya atau Zika tidak ditemukan. Di Thailand, demam berdarah terdeteksi pada 0,07% sampel, chikungunya 0,03%, dan Zika 0,02%. Meskipun prevalensi viraemia secara keseluruhan pada pendonor darah rendah, poin utama yang perlu diperhatikan adalah adanya viraemia yang terukur pada pendonor yang tidak menunjukkan gejala. Temuan ini menyoroti risiko potensial infeksi yang ditularkan melalui transfusi darah dan memperkuat argumen untuk menerapkan skrining rutin pada pendonor darah, terutama di daerah endemik demam berdarah [15]. Selama wabah demam berdarah, tes berbasis antibodi seringkali tidak mendeteksi infeksi pada tahap awal, sementara NAT, yang mendeteksi RNA virus, dianggap sebagai metode paling tepat untuk skrining donor dan dapat secara signifikan mengurangi penularan melalui transfusi [2]. Kasus demam berdarah yang menular melalui transfusi tercatat terjadi di Hong Kong, Singapura, Brasil, dan Puerto Riko, dari pendonor tanpa gejala [2]. Namun, skrining rutin untuk RNA demam berdarah belum secara luas diterapkan di wilayah ini, yang dapat menimbulkan celah potensial dalam protokol keamanan saat ini, terutama selama wabah. Zika: risiko nyata, tetapi kurang diperhatikan. Ancaman penularan Zika melalui transfusi darah menjadi tak terbantahkan selama wabah di Amerika pada tahun 2015-2016. Di Puerto Rico, RNA Zika ditemukan pada lebih dari 1% donor darah selama periode wabah aktif – semua dari donor yang tidak menunjukkan gejala. Setidaknya satu kasus Zika yang ditularkan melalui transfusi darah telah dilaporkan di Brasil, yang melibatkan penerima yang memiliki sistem kekebalan tubuh yang lemah [13]. Meskipun Zika dan demam berdarah memiliki vektor nyamuk yang sama, perhatian utama terhadap pelayanan darah bukanlah penularan yang berlangsung tetapi potensi untuk risiko transfusi selama wabah. Akibatnya, pengujian Zika universal tidak lagi direkomendasikan oleh sebagian besar otoritas regulator. Sebaliknya, skrining NAT dengan target selama wabah dianggap sebagai pendekatan yang lebih praktis dan berbasis risiko. Di wilayah Asia Pasifik, skrining rutin NAT untuk virus Zika saat ini tidak dilakukan [7]. Namun, protokol respons wabah mungkin menawarkan cara yang lebih efisien untuk mengelola risiko di daerah yang terdampak.
Gelombang infeksi virus berikutnya
Antara tahun 2002 dan 2013, lebih dari 30 kasus penularan Virus West Nile (WNV) melalui transfusi darah dilaporkan di Amerika Serikat, yang semuanya terjadi selama periode penularan lokal yang aktif [13]. Merespons atas hal ini, Amerika Serikat menerapkan skrining NAT musiman, yang mengakibatkan penurunan signifikan dalam kasus TTIs terkait WNV [16]. Meskipun WNV tidak endemik di sebagian besar wilayah Asia Pasifik, contoh ini menggarisbawahi pentingnya strategi skrining yang fleksibel dan berbasis informasi risiko. Seiring dengan munculnya patogen baru – atau penyebaran patogen yang sudah ada akibat perubahan iklim dan vektor – pengujian terarah berdasarkan epidemiologi regional dapat membantu mencegah infeksi yang ditularkan melalui transfusi tanpa membebani sistem secara berlebihan.
Parasit: langka tetapi berisiko tinggi
Babesia microti, parasit yang ditularkan oleh kutu, menimbulkan risiko serius bagi penerima transfusi darah, terutama bagi mereka yang sistem kekebalannya lemah. Babesiosis yang ditularkan melalui transfusi (TTB) memiliki tingkat morbiditas dan mortalitas sekitar 19% [17]. Seiring dengan meningkatnya kasus TTB di Amerika Serikat, hal ini memicu dilakukannya pemantauan donor, pengembangan tes, dan penelitian lebih dari satu dekade. Hal ini menyebabkan pelaksanaan skrining donor darah di daerah endemik, yang menggunakan baik tes serologi maupun molekuler. Dalam sebuah studi terhadap lebih dari 89.000 donor darah, skrining Babesia microti mengidentifikasi 0,38% positif, termasuk kasus positif PCR yang terdeteksi sepanjang tahun dan 13% yang negatif antibodi. Di wilayah yang telah menjalani skrining seperti Connecticut dan Massachusetts, tidak ada kasus babesiosis yang ditularkan melalui transfusi (TTB) yang dilaporkan, dibandingkan dengan satu kasus setiap 18.074 donor darah yang tidak diskrining. Hal ini menunjukkan penurunan risiko sebesar delapan kali lipat [18]. Penularan malaria melalui transfusi darah jarang terjadi tetapi dapat dicegah, dan semakin relevan untuk layanan transfusi darah di daerah endemik. Deteksi parasit malaria dengan metode sediaan tebal sering digunakan. Namun, teknik ini memakan waktu, sangat bergantung pada operator, dan rentan terhadap kesalahan. Di negara-negara endemik, penggunaan uji imunologi enzim (EIA) yang sangat sensitif untuk deteksi antigen malaria juga direkomendasikan oleh WHO [19]. Uji mikroskopi sediaan tebal dan uji antigen EIA mungkin hanya dapat mendeteksi sekitar 100 parasit per mikroliter (µL), atau 45 juta parasit dalam donor darah 450 mL [20,21]. Pengujian ini dirancang untuk mendeteksi infeksi yang menimbulkan gejala, dan bukan untuk mencegah penularan dari unit darah dengan parasitemia tingkat rendah. Baru-baru ini, berbagai tes berbasis NAT telah muncul yang mungkin lebih cocok untuk skrining donor darah. Tes untuk RNA ribosomal (rRNA) telah dikembangkan, dengan beberapa keuntungan dibandingkan tes berbasis DNA. RNA ribosom jauh lebih melimpah daripada asam nukleat genomik, dengan 1 × 10^4 salinan rRNA per parasit pada tahap cincin P. falciparum [22]. Dengan menggunakan rRNA, deteksi tingkat parasitemia yang sangat rendah dapat dilakukan. Uji berbasis NAT dapat berperan dalam mencegah malaria yang ditularkan melalui transfusi darah di negara-negara endemik maupun non-endemik. Di Indonesia, 4,5% pendonor memiliki antibodi malaria, dan 1,2% positif PCR [23]. Sebuah tinjauan terhadap 13 kasus malaria yang ditularkan melalui transfusi darah (TTM) di negara-negara non-endemik sejak 2010 menemukan bahwa PCR berbasis DNA mendeteksi infeksi Plasmodium pada 10 dari 12 donor sumber yang diuji, dengan dua hasil negatif terkait dengan sampel yang rusak dan disimpan. Sebaliknya, tes EIA antibodi hanya positif pada tiga dari tujuh donor, sehingga melewatkan lebih dari setengah kasus. Temuan-temuan ini menyoroti terbatasnya keandalan metode serologis, terutama pada pendonor yang tidak menunjukkan gejala. Uji molekuler berbasis rRNA yang lebih baru, yang kira-kira 1000 kali lebih sensitif daripada DNA PCR, menawarkan potensi yang lebih besar lagi untuk mencegah TTM melalui deteksi awal, sehingga mendukung PCR sebagai metode pilihan, terutama di daerah-daerah endemik di mana pengujian antibodi kurang bermanfaat [24].
Kesimpulan
Apa yang ditunjukkan ini jelas: panel pengujian berdasarkan risiko historis tidak lagi memadai. Setiap wabah, perubahan iklim, dan migrasi vektor menciptakan titik masuk potensial baru untuk patogen ke dalam pasokan darah. Strategi skrining donor harus didasarkan pada kondisi setempat, dan memperhitungkan wabah serta perubahan prevalensi penyakit, bukan hanya indikator lama. Untuk layanan transfusi darah di kawasan Asia Pasifik, langkah ke depan terletak pada tinjauan rutin terhadap risiko regional, protokol skrining yang responsif terhadap wabah, dan penggunaan tes yang tepat untuk patogen yang tepat – baik itu serologi atau NAT. Penerapan strategi yang fleksibel dan didukung oleh bukti ilmiah akan menjadi kunci dalam memperkuat keamanan darah di berbagai lanskap epidemiologis.
Referensi
[1] World Health Organization. 2009. “Screening Donated Blood for Transfusion-Transmissible Infections: Recommendations.” Screening for transfusion-transmissible infections (WHO Press). https://www.ncbi.nlm.nih.gov/books/NBK142989/.
[2] Asia Pacific Blood Network. 2019. “Dengue and the Blood Supply.” White Paper, 12.
[3] Viet, Le, Nguyen Thi Ngoc Lan, Phung Xuan Ty, Björn Björkvoll, Hedda Hoel, Tore Gutteberg, Anne Husebekk, Stig Larsen, Eystein Skjerve, dan Hans Husum. 2012. “Prevalence of hepatitis B & hepatitis C virus infections in potential blood donors in rural Vietnam.” The Indian Journal of Medical Research (Indian Council of Medical Research New Delhi) 136 (1): 74-81. https://www.researchgate.net/publication/230656382_Prevalence_of_hepatitis_B_hepatitis_
C_virus_infections_in_potential_blood_donors_in_rural_Vietnam.
[4] World Health Organization. 2012. Blood Donor Selection: Guidelines on Assessing Donor Suitability for Blood Donation. Geneva: World Health Organization. https://www.ncbi.nlm.nih.gov/books/NBK138218/.
[5] Peeling, Rosanna W., David Mabey, Mary L. Kamb, Xiang-Sheng Chen, Justin D. Radolf, dan Adele S. Benzaken. “Syphilis.” Nature Reviews Disease Primers 3, no. 1 (October 12, 2017). https://doi.org/10.1038/nrdp.2017.73.
[6] Rattanatham, Rujikorn, Wanida Mala, Kwuntida Uthaisar Kotepui, Frederick Ramirez Masangkay, Chutima Rattanawan, Supakanya Lasom, Kinley Wangdi, dan Manas Kotepui. “A Systematic Review and Meta-Analysis of the Prevalence and Risk of Syphilis among Blood Donors in Thailand.” Scientific Reports 15, no. 1 (March 18, 2025). https://doi.org/10.1038/s41598-025-94332-3.
[7] Moreira-Soto, Andres, Ignacio Postigo-Hidalgo, Ximena Tabares, Yannik Roell, Carlo Fischer, Eduardo Gotuzzo, Thomas Jaenisch, José Eduardo Levi, Yaniv Lustig, dan Jan Felix Drexler. “Transfusion-Transmitted Infections: Risks and Mitigation Strategies for Oropouche Virus and Other Emerging Arboviruses in Latin America and the Caribbean.” The Lancet Regional Health – Americas 46 (June 2025): 101089. https://doi.org/10.1016/j.lana.2025.101089.
[8] Bangalee, Avania, Sachin Bhoora, dan Rivak Punchoo. “Evaluation of Serological Assays for the Diagnosis of HIV Infection in Adults.” South African Family Practice 63, no. 1 (25 Oktober 2021). https://doi.org/10.4102/safp.v63i1.5316.
[9] Huynh, Katie. “HIV Testing.” StatPearls [Internet]., 17 April 2023. https://www.ncbi.nlm.nih.gov/books/NBK482145/.
[10] “Clinical Screening and Diagnosis for Hepatitis C.” Centers for Disease Control and Prevention, 31 Januari 2025. https://www.cdc.gov/hepatitis-c/hcp/diagnosis-testing/index.html.
[11] Conners, Erin E., Lakshmi Panagiotakopoulos, Megan G. Hofmeister, Philip R. Spradling, Liesl M. Hagan, Aaron M. Harris, Jessica S. Rogers-Brown, et al. “Screening and Testing for Hepatitis B Virus Infection: CDC Recommendations — United States, 2023.” MMWR. Recommendations and Reports 72, no. 1 (10 Maret 2023): 1–25. https://doi.org/10.15585/mmwr.rr7201a1.
[12] Huang, Rongrong, and Jieli Lee. “Hepatitis B Testing.” Disunting oleh Patricia Tsang. Pathology Outlines. Diakses pada 1 Juli 2025. https://www.pathologyoutlines.com/topic/chemistryhepatitisB.html.
[13] Kim, Han Joo, dan Dae-Hyun Ko. “Transfusion-Transmitted Infections.” Blood Research 59, no. 1 (April 12, 2024). https://doi.org/10.1007/s44313-024-00014-w.
[14] Tung, Tran Thanh, Jürgen Schmid, Vu Xuan Nghia, Le Chi Cao, Le Thi Linh, Ikrormi Rungsung, Bui Tien Sy, et al. “Low Risk of Occult Hepatitis B Infection among Vietnamese Blood Donors.” Pathogens 11, no. 12 (13 Desember 2022): 1524. https://doi.org/10.3390/pathogens11121524.
[15] Stanley, Jean, Viroje Chongkolwatana, Pham Tuan Duong, Pimpun Kitpoka, Susan L. Stramer, Nguyen Thi Dung, Kacie E. Grimm, Anyarin Pojanasingchod, Panitita Suksomboonvong, and Susan A. Galel. “Detection of Dengue, Chikungunya, and Zika RNA in Blood Donors from Southeast Asia.” Transfusion 61, no. 1 (7 Oktober 2020): 134–43. https://doi.org/10.1111/trf.16110.
[16] Centers for Disease Control and Prevention (CDC). “Update: West Nile Virus Screening of Blood Donations and Transfusion-Associated Transmission—United States, 2003.” MMWR Morb Mortal Wkly Rep 53, no. 13 (12 April 2004): 2184.
[17] Bloch, Evan M., Peter J. Krause, dan Laura Tonnetti. “Preventing Transfusion-Transmitted Babesiosis.” Pathogens 10, no. 9 (13 September 2021): 1176. https://doi.org/10.3390/pathogens10091176.
[18] Moritz, Erin D., Colleen S. Winton, Laura Tonnetti, Rebecca L. Townsend, Victor P. Berardi, Mary-Ellen Hewins, Karen E. Weeks, Roger Y. Dodd, dan Susan L. Stramer. “Screening for Babesia Microti in the U.S. Blood Supply.” New England Journal of Medicine 375, no. 23 (8 December 2016): 2236–45. https://doi.org/10.1056/nejmoa1600897.
[19] World Health Organization. 2009. “Screening Donated Blood for Transfusion-Transmissible Infections: Recommendations.” Screening for transfusion-transmissible infections (WHO Press). https://www.ncbi.nlm.nih.gov/books/NBK142989/.
[20] Bejon, Philip, Laura Andrews, Angela Hunt-Cooke, Frances Sanderson, Sarah C Gilbert, dan Adrian VS Hill. “Pemeriksaan Darah Yang Tebal Untuk Malaria Plasmodium Falciparum Telah Mengurangi Sensitivitas Dan Meremehkan Kepadatan Parasit.” Malaria Journal 5, no. 1 (November 8, 2006). https://doi.org/10.1186/1475-2875-5-104.
[21] Kitchen, A. D., dan P. L. Chiodini. “Malaria and Blood Transfusion.” Vox Sanguinis 90, no. 2 (20 Januari 2006): 77–84. https://doi.org/10.1111/j.1423-0410.2006.00733.x.
[22] Murphy, Sean C., Jennifer L. Prentice, Kathryn Williamson, Carolyn K. Wallis, Ferric C. Fang, Michal Fried, Cris Pinzon, et al. “Real-Time Quantitative Reverse Transcription PCR for Monitoring of Blood-Stage Plasmodium Falciparum Infections in Malaria Human Challenge Trials.” The American Society of Tropical Medicine and Hygiene 86, no. 3 (1 Maret 2012): 383–94. https://doi.org/10.4269/ajtmh.2012.10-0658.
[23] Nethasia Louhenapessy, Nethasia, Ria Syafitri Evi Ria Syafitri Evi Gantini, Susan Rahayu, Elisabeth Lilipory, Heri Wibowo, Yuyun Soedarmono, dan Inge Sutanto. “Evaluating Laboratory Screening Tests for Malaria on Blood Donors Candidates to Reduce the Risk of Transfusion-Transmitted Malaria in an Endemic Area of Indonesia.” Medical Journal of Indonesia 30, no. 3 (10 Oktober 2021): 191–97. https://doi.org/10.13181/mji.oa.215491.
[24] Galel, Susan A. “Laboratory Detection of Donors Implicated in Transfusion‐transmitted Malaria.” Transfusion 64, no. 12 (6 November 2024): 2325–31. https://doi.org/10.1111/trf.18061.
